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细胞名称:HeLa-LUC人宫jing癌细胞-荧光素酶标记
培养条件:DMEM +10% FBS
形 态:贴壁;上皮细胞样
“一代”指从细胞接种到分离再培养的一段期间,与细胞世代或倍增不同。在一代中,细胞培增3~6次。细胞传代后,一般经过三个阶段:游离期、指数增生期和停止期。常用细胞分裂指数表示细胞增殖的旺盛程度,即细胞群的分裂相数/100个细胞。一般细胞分裂指数介于0.2%~0.5%,肿瘤细胞可达3~5%。接种2~3天分裂增殖旺盛,是活力时期,称指数增生期(对数生*),适宜进行各种试验。
formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比(死细胞中琥珀酸脱氢酶消失,不能将MTT还原)。还原生成的formazan结晶可在含50%的N,N-二甲基甲酰胺和20%的十二甲基磺酸钠(pH 4.7)的MTT溶解液中溶解,利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值,以反映出活细胞数目。也可以用DMSO来溶解。MTT粉末和溶液保存时都需要避光,用铝箔纸包好就可以。实验的时候一般关闭超净台上的日光灯来避光,觉得这样比较好。
目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质能提高细胞膜对水的通透性,加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外,减少细胞内冰晶的形成,从而减少由冰晶形成的细胞损伤。
1、10%的DMSO+90%胎牛血清。甘油一般用于菌种保存很少用于细胞冻存。
2、取对数生*的细胞,用*把单层生长的细胞消化下来,悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中。
3、离心1000 rpm,5 min。
4、去除*及旧的培养液,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的zui终密度为5x10^6/ml~1x10^7/ml。
5、 在冻存管上标明细胞的名称,冻存时间及操作者。
6、冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/min;当温度达到-25℃以下时,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h,然后放入-70℃冰箱中过夜,取出冻存管,移入液氮容器内。
1.接种:用含10%胎小牛血清得培养液配成单个细胞悬液,以每孔1000-10000个接种到96孔板,每孔体积200ul.
2细胞培养:同一般培养条件,培养3-5天(可根据试验目的和要求决定培养时间)。
3.呈色:培养3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS 配)20ul.
继续孵育4小时,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,对于悬浮需要离心后再吸弃孔内培养上清液。每孔加150ul DMSO,振荡10分钟,使结晶物充分融解。
HeLa-LUC人宫jing癌细胞-荧光素酶标记
组份 | 数目 |
细胞 | 1 T-25瓶 |
细胞说明书 | 一份 |
生长特性: | 贴壁生长
|
细胞来源: | 从ATCC/中科院/协和医院等地引进 |
培养条件: | 培养基:F12K+0.1mg/ml肝素+1%ECGS +10%FBS(*德国SERANA S-FBS-SA-015优等胎牛血清) 气相:空气95%,二氧化碳5% 温度:37℃ |
培养: |
1.用75%酒精喷洒整个瓶消毒,将其平躺置于培养箱中进行2-3小时的缓冲,.然后置于无菌操作台,打开瓶口,将其中的培养液去掉,再往其中加入5-6mL新鲜培养基并置于细胞培养箱中培育,根据细胞生长状况及培养基颜色变化对其进行换液以及传代; 2.待细胞长满瓶底面积80%-90%,需要对其进行传代,*次传代比例为1:2。 3传代步骤:将0.25%含EDTA*置于37°预热,倒掉培养瓶中的培养基,往培养瓶中加入1mlPBS,轻晃洗涤后弃去。往瓶中加1ml预热好的*,置于37°孵育消化(*次消化需时常取出置于显微镜下观察,以显微镜下细胞触角回收变圆、轻拍瓶壁见细胞脱落为*消化时间,记录*消化时间,以便于下次消化),消化好后加入1ml*培养基终止消化。用移液枪轻轻吹打瓶壁上的细胞,使之*脱落,然后收集细胞悬液,1200rpm离心3min,弃上清,加入*培养基重悬细胞,进行传代。
二、悬浮细胞 1.用75%酒精喷洒整个瓶消毒,然后置于无菌操作台,打开瓶口,轻轻吹打后,将其中的细胞悬液转移到离心管中,然后1200rpm离心3min,去上清; 2.将离心好的细胞转移至T-25瓶中,并加入5-6mL新鲜培养基,然后将其置于细胞培养箱中培育,根据细胞生长状况及培养基颜色变化对其进行换液(离心后去旧液,加入新鲜培养基); 3.显微镜观察细胞数目比较多时,对其进行传代,*次传代比例为1:2(离心后平均分成两瓶培养)。
|
细胞总数: | 1~3*106 |
传代周期: | 2-3天 |
传代比例: | 1:2~1:4 |
换液频率: | 2-3天 |
冻存液: | 90%FBS+10%DMSO |
三、如为悬浮细胞,吸出培养液,1000转/分钟离心5分钟,吸出上清,管底细胞用新鲜培养基悬浮细胞后移回培养瓶。
注意:换液时一半用我们的培养基,一半用你们的,以免细胞不适应而造成生长不好。
更多细胞培养注意事项如下
1培养细胞时应使用5%还是10%CO2,或者根本没有影响?
答:一般培养基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作为pH 的缓冲系统, 而培养基中NaHCO3的含量将决定细胞培养时应使用的CO2浓度。当培养基中NaHCO3 含量为每公升3.7g时,细胞培养时应使用10% CO2;当培养基中NaHCO3为每公升1.5g时,则应使用5%CO2培养细胞。
11.细胞冷冻管解冻培养时,是否应马上去除DMSO?
答:除少数特别注明对DMSO敏感之细胞外,绝大部分细胞株(包括悬浮性细胞),在解冻之后,应直接放入含有10-15ml新鲜培养基之培养方瓶中,待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO即可,如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。
12.冷冻管应如何解冻?
答:取出冷冻管后,须立即放入37℃水槽中快速解冻,轻摇冷冻管使其在1-2 分钟内大部分融化,特别注意,需残留一小块冰块,就可拿到超净工作台操作细胞,用75%消毒冻存管,用新鲜培养基将细胞转移至培养瓶。另外冷冻管由液氮桶中取出解冻时,必须注意安全,预防冷冻管之爆裂
13.如何用台盼兰计数活细胞?
答:将样品适当稀释后,用稀释后的样品和0.4%的台盼兰溶液按1:1混合后,用移液枪点样到血球计数板,置于倒置显微镜下观察、计数,其中蓝色细胞是死细胞,因活细胞排斥台盼兰,不被染色。
14.细胞欲冷冻保存时,细胞冷冻管内应有多少细胞浓度?
答:冷冻管内细胞数目一般为1-8×106 cells/ml vial。
15.细胞冷冻培养基之成份为何?
答:动物细胞冷冻保存时较常使用的冷冻培养基是含9 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90 - 95 % 原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。注意:由于DMSO 稀释时会放出大量热能,故不可将DMSO 直接加入细胞液中,必须使用前先行配制完成。