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GMS150高精度气体调控系统

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2021-04-17
型号
北京易科泰生态技术有限公司

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产品简介
GMS150高精度气体调控系统
详细信息

GMS150高精度气体调控系统可以将*多4种不同气体进行精确混合。每路输入气体的流量使用热式质量流量计精确测量,并由内置的质量流量控制器进行精准控制,输出的是*混合的均质气体。气体输入输出使用Prestolok快速安全接头,保证使用过程中的便捷性与安全性。

GMS150高精度气体调控系统可用于二氧化碳、氮气、一氧化碳、甲烷、氨气以及其他气体的浓度控制。

GMS150高精度气体调控系统分为GMS150版和GMS150-MICRO版,其中GMS150版精度更高,GMS150-MICRO版可调控流速更大。

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应用领域:

Ÿ与植物培养箱、光养生物反应器等联用,进行精确气体控制培养

Ÿ模拟不同CO2浓度环境,研究温室效应对植物/藻类的影响

Ÿ研究CO2浓度与光合作用的关系

Ÿ模拟烟气等有害气体对植物/藻类的影响

Ÿ研究植物/藻类对有害气体的处理与利用

技术参数:

Ÿ测量原理:热式质量流量测量法

Ÿ可调控气体:空气、氮气、二氧化碳、氧气、一氧化碳、甲烷、氨气等干燥纯净、无腐蚀性、无爆炸性气体,气源需用户自备

Ÿ调控通道:标配为2通道,通道1为Air-N2,通道2为CO2,*多可扩展为4通道

Ÿ工作温度:15-50℃

Ÿ输入/输出接头:Parker Prestolok接头(6mm)

Ÿ输入压力:3-5bar

Ÿ密封:氟化橡胶

Ÿ显示屏:8×21字符液晶显示屏

Ÿ尺寸:37cm×28×15cm

Ÿ供电:115-230V交流电

Ÿ可联用仪器:FMT150藻类培养与在线监测系统、MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、FytoScope系列智能LED光源生长箱、用户自行设计的培养箱或反应器(可提供气路连接方案)等

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与FMT150藻类培养与在线监测系统联用的GMS150

与FytoScope智能LED光源生长箱联用的GMS150

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与中科院海洋所自行设计的培养装置联用的GMS150

GMS150版调控参数:

Ÿ*小流量范围:0.02 - 1 ml/min

Ÿ*流量范围:20 - 1000 ml/min

Ÿ可定制流量范围:可在*流量和*小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 20-1000 ml/min;通道2(CO2): 0.4-20 ml/min;可调控CO2浓度0.04% - *(实际调控浓度与流量有关)

Ÿ精度:±0.5%,加全量程±0.1%(3-5ml/min为全量程±1%,<3ml/min为全量程±2%)

Ÿ稳定性:<全量程±0.1%(参考1ml/min N2

Ÿ稳定时间:1~2s

Ÿ预热时间:30min预热达到精度,2min预热偏差±2%

Ÿ温度灵敏度:<0.05%/℃

Ÿ压力灵敏度:0.1%/bar(参考N2

Ÿ姿态灵敏度:1bar 压力下与水平面保持90°**.2%(参考N2

Ÿ重量:7kg

GMS150-MICRO版调控参数:

Ÿ*小流量范围:0.2 - 10 ml/min

Ÿ*流量范围:100 - 5000 ml/min

Ÿ可定制流量范围:可在*流量和*小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 40-2000 ml/min;通道2(CO2): 0.8-40 ml/min;可调控CO2浓度0.04% - *(实际调控浓度与流量有关)

Ÿ精度:±1.5%,加全量程±0.5%

Ÿ重复性:流量<20 ml/min为全量程±0.5%,流量>20 ml/min为实际流量±0.5%

Ÿ稳定时间:1s

Ÿ预热时间:30min预热达到精度,2min预热偏差±2%

Ÿ温度灵敏度:零点<0.01%/℃,满度<0.02%/℃

Ÿ姿态灵敏度:1bar 压力下与水平面保持90°**.5 ml/min(参考N2

Ÿ重量:5kg

应用案例:

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与FMT150藻类培养与在线监测系统联用研究蓝藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代谢节律(Cervený, 2013, PNAS)

产地:欧洲

参考文献:

1.Strenkert D, et al. 2019. Multiomics resolution of molecular events during a day in the life of Chlamydomonas. PNAS, 116 (6): 2374-2383

2.Sukačová K, et al. 2019. Optimization of microalgal growth and c*tion parameters for increasing bioenergy potential: Case study using the oleaginous microalga Chlorella pyrenoidosa Chick (IPPAS C2). Algal Research 40: 101519

3.Cordara A, et al. 2018. Analysis of the light intensity dependence of the growth of Synechocystis and of the light distribution in a photobioreactor energized by 635 nm light. PeerJ, 6:e5256, DOI 10.7717/peerj.5256

4.Cordara A, et al. 2018. Response of the thylakoid proteome of Synechocystis sp. PCC 6803 to photohinibitory intensities of orange-red light. Plant physiology and biochemistry, 132: 524-534

5.Alphen P, et al. 2018. Increasing the Photoautotrophic Growth Rate of Synechocystis sp. PCC 6803 by Identifying the Limitations of Its C*tion. Biotechnology Journal 13(8): 700764

6.Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769

7.Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902

8.Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347

9.Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423

10.Angermayr S A, et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N2 and CO2 in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189

11.Acuña A M, et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249

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